本期內(nèi)容我們一起走進免疫熒光常見問題的分析，幫助大家解決在實驗過程中遇到的一些問題，讓大家都能成為免疫熒光小能手。

常見問題：

1、背景熒光高

① 洗滌不足：充分洗滌，適當增加洗滌次數(shù)和時間；

② 樣本干燥：在濕盒中孵育抗體，避免干燥；

③ 抗體濃度過高：預(yù)實驗測定Z佳濃度；

④ 樣本自發(fā)熒光：染色前先行檢測自發(fā)熒光情況；

⑤ 封閉不充分：延長封閉時間或更換封閉液；

⑥ 二抗非特異性結(jié)合：做一組只加二抗孵育的作為對照；

⑦ 抗體孵育時間過長：嚴格控制孵育時間，適當減少孵育時間；

⑧ 切片在緩沖液或修復(fù)液中浸泡時間太長(大于24小時)：有時切片脫蠟至修復(fù)會過夜，第E天加抗體進行染色，如果將裝有切片和修復(fù)液的容器放在4oC冰箱過夜，對結(jié)果無明顯影響，如果放在室溫，特別是炎熱的夏天，會出現(xiàn)背景著色，因此，不可存放時間太長；

⑨ 熒光背景噪音大：更換熒光顯微鏡，使用能夠降低背景熒光干擾的顯微鏡。

2、熒光信號弱

① 熒光通道的激發(fā)波長和發(fā)射波長與染料不匹配：確保使用的顯微鏡的熒光通道與染料熒光基團的波長相匹配；

② 一抗或二抗不兼容：注意種屬是否正確；

③ 一抗不好用：陽性對照確認抗體有效性；

④ 固定過度或不充分：適當調(diào)整固定時間；

⑤ 樣本保存不當導(dǎo)致熒光淬滅：注意保存過程中的濕度和避光；

⑥ 一抗變質(zhì)或質(zhì)量差的多克隆抗體：注意抗體有效期，與新買抗體或用過的抗體作比較；

⑦ 信號弱或無信號：可裂解細胞后，用WB驗證目標蛋白在細胞中是否表達；

⑧ 顯微鏡收集熒光和成像的能力差：選擇一款相機配置好、熒光收集能力強、成像效果好的熒光顯微鏡。

3、細胞/組織形態(tài)被破壞

① 組織從玻片上脫落或有氣泡：適當增加固定時間，封片時注意不要產(chǎn)生氣泡；

② 細胞或組織固定不充分，自發(fā)裂解：使用交聯(lián)性固定劑，適當增加固定時間；

③ 組織切片撕裂或有褶皺：切片過程導(dǎo)致的問題，考慮重新進行切片。

4、定位不對

可使用帶明場通道的熒光顯微鏡進行共定位

① 細胞核干擾：細胞核位置前面的細胞質(zhì)染色干擾造成，可以降低抗體濃度或孵育時間；

② 細胞或者組織狀態(tài)不對：細胞或者組織狀態(tài)不同導(dǎo)致目的蛋白細胞定位不同，造成Z后的定位不對，可重新培養(yǎng)細胞調(diào)整好狀態(tài)或者重新取材，進行再次染色；

③ 核定位不對：可將封閉和打孔合為一步，即在封閉液中添加0.5% TRITON-100，37℃封閉2h，加一抗后Z好4℃孵育過夜(16h)；

④ 不確定觀察到的是不是需要的染色位置：使用帶明場通道的熒光顯微鏡，進行熒光定位，確定觀察到的染色位置是否正確。

對照實驗設(shè)置

①內(nèi)源性組織背景對照

某些含有固有的生物化學(xué)性質(zhì)的組織或細胞，會產(chǎn)生背景或自發(fā)熒光，對結(jié)果產(chǎn)生影響。以下圖為例，DAPI染核，F(xiàn)ITC染邊界和中間的晶狀結(jié)構(gòu)，而TRITC染整個組織背景的顏色，但綠色也產(chǎn)生了背景熒光，對三通道疊加造成了干擾。

②陰性對照

使用確定不含有待測抗原的細胞或組織，與待測樣本統(tǒng)一處理，同一觀察，結(jié)果若為陰性，可排除染色過程中由于非特異性染色造成的假陽性。

③陽性對照

與陰性對照相反，用確定含有待測抗原的細胞或組織，與待測樣本統(tǒng)一處理，同一觀察，結(jié)果若為陽性，可證明待測抗原具有活性且實驗過程沒有問題，方法操作可靠。

免疫熒光高清成像

在精心完成免疫熒光后，選擇一款操作簡單、成像清晰、效果好的熒光顯微鏡進行觀察拍照，才能輕松得到更為理想的結(jié)果圖，達到事半功倍的效果。